Анализ комет

редактировать
Снимок экрана приложения CaspLab Comet Assay

Анализ одноклеточного гель-электрофореза (SCGE, также известный как кометный анализ ) - несложный и чувствительный метод обнаружения повреждения ДНК на уровне отдельной эукариотической клетки. Впервые он был разработан Östling Johansson в 1984 году, а затем модифицирован Сингхом и др. в 1988. С тех пор он стал популярным как стандартный метод оценки повреждений / репарации ДНК, биомониторинга и тестирования генотоксичности. Он включает инкапсуляцию клеток в суспензию агарозы с низкой температурой плавления, лизис клеток в нейтральных или щелочных (pH>13) условиях и электрофорез суспендированных лизированных клеток. Термин «комета» относится к модели миграции ДНК через гель для электрофореза, который часто напоминает комету.

Анализ кометы (электрофорез в одноклеточном геле) представляет собой простой метод измерения дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) разрывы цепи в эукариотических клетках. Клетки, внедренные в агарозу на предметном стекле микроскопа, лизируют детергентом и высоким содержанием соли с образованием нуклеоидов, содержащих суперспиральные петли ДНК, связанные с ядерным матриксом. Электрофорез при высоком pH приводит к образованию структур, напоминающих кометы, наблюдаемых с помощью флуоресцентной микроскопии; Интенсивность кометного хвоста относительно головы отражает количество разрывов ДНК. Вероятно, причиной этого является то, что петли, содержащие разрыв, теряют свою сверхспиральность и могут свободно расширяться к аноду. Затем следует визуальный анализ с окрашиванием ДНК и вычислением флуоресценции для определения степени повреждения ДНК. Это может быть выполнено вручную или автоматически с помощью программного обеспечения для визуализации.

Содержание
  • 1 Процедура
    • 1.1 Инкапсуляция
    • 1.2 Лизис
    • 1.3 Электрофорез
  • 2 Фон
  • 3 Приложения
    • 3.1 Фрагментация ДНК сперматозоидов
  • 4 Ссылки
  • 5 Дополнительная литература
Процедура

Инкапсуляция

Образец клеток, полученных либо из in vitro клеточную культуру или от испытуемого in vivo диспергируют в отдельные клетки и суспендируют в расплавленной легкоплавкой агарозе при 37 ° C. Эту моновуспензию отливают на предметное стекло микроскопа. Стекло покровное стекло держат под углом, и моновспензию наносят на точку контакта между покровным стеклом и предметным стеклом. Когда покровное стекло опускается на предметное стекло, расплавленная агароза растекается, образуя тонкий слой. Агароза превращается в гель при 4 ° C и покровное стекло удаляется.

Агароза образует матрицу из углеводных волокон, которые инкапсулируют клетки, закрепляя их на месте. Агароза считается осмотической -нейтральной, поэтому растворы могут проникать в гель и воздействовать на клетки без изменения положения клеток.

В исследовании in vitro клетки будут подвергаться воздействию тестируемого агента - обычно УФ-свет, ионизирующее излучение или генотоксичное химическое вещество. - вызвать повреждение ДНК в инкапсулированных клетках. Для калибровки обычно используется перекись водорода, чтобы обеспечить стандартизованный уровень повреждения ДНК.

Лизис

Затем слайды погружают в раствор, который вызывает лизис клеток. Лизирующий раствор, часто используемый в анализе комет, состоит из высококонцентрированной водной соли (часто может использоваться обычная поваренная соль ) и детергента (например, Тритон Х-100 или саркозинат ). pH лизирующего раствора можно регулировать (обычно от нейтрального до щелочного pH) в зависимости от типа повреждения, которое исследует исследователь.

Водная соль разрушает белки и их структуру связывания внутри клетки, а также нарушает содержание РНК в клетке. Детергент растворяет клеточные мембраны. Под действием лизирующего раствора клетки разрушаются. Все белки, РНК, мембраны и цитоплазматические и нуклеоплазматические составляющие разрушаются и диффундируют в матрикс агарозы. Остается только ДНК клетки, которая распадается, заполняя полость в агарозе, которую прежде заполняла вся клетка. Эта структура называется нуклеоидом (общий термин для структуры, в которой сосредоточена ДНК).

Электрофорез

После лизиса клеток (обычно от 1 до 2 часов при 4 ° C) слайды промывают дистиллированной водой для удаления всех солей и погружают в второй раствор - раствор для электрофореза . Опять же, этот раствор можно регулировать pH в зависимости от типа исследуемого повреждения.

Предметные стекла оставляют на ~ 20 минут в растворе для электрофореза перед приложением электрического поля. В щелочных условиях двойная спираль ДНК денатурируется, и нуклеоид становится одноцепочечным.

Приложено электрическое поле (обычно 1 V /cm ) в течение ~ 20 минут. Затем слайды нейтрализуют до pH 7, окрашивают ДНК-специфическим флуоресцентным красителем и анализируют с помощью микроскопа с прикрепленной ПЗС (устройство с зарядовой связью - по сути, это цифровая камера ), подключенная к компьютеру с программным обеспечением анализа изображений.

Предпосылки

Концепция, лежащая в основе анализа SCGE, заключается в том, что неповрежденная ДНК сохраняет высокоорганизованную ассоциацию с матричными белками в ядре. При повреждении эта организация нарушается. Отдельные нити ДНК теряют свою компактную структуру и расслабляются, расширяясь из полости в агарозу. При приложении электрического поля ДНК, которая имеет общий отрицательный заряд, притягивается к положительно заряженному аноду. Неповрежденные нити ДНК слишком велики и не покидают полость, тогда как чем меньше фрагменты, тем дальше они могут свободно перемещаться за определенный период времени. Таким образом, количество ДНК, которая покидает полость, является мерой степени повреждения ДНК в клетке.

Анализ изображения измеряет общую интенсивность флуоресценции для всего нуклеоида и флуоресценцию мигрировавшей ДНК и сравнивает два сигнала. Чем сильнее сигнал от перемещенной ДНК, тем больше повреждений. Общая структура напоминает комету (отсюда «кометный анализ») с круглой головкой, соответствующей неповрежденной ДНК, которая остается в полости, и хвостом поврежденной ДНК. Чем ярче и длиннее хвост, тем выше уровень повреждений.

Кометный анализ - это универсальный метод обнаружения повреждений, который с корректировкой протокола может быть использован для количественной оценки наличия большого количества разнообразных повреждений ДНК (повреждений). Обычно выявляются разрывы одинарных и двойных нитей. Иногда утверждается, что щелочные условия и полная денатурация ДНК необходимы для обнаружения разрывов одной нити. Однако это не так, как одно-, так и двухцепочечные разрывы также обнаруживаются в нейтральных условиях. Однако в щелочных условиях дополнительные структуры ДНК обнаруживаются как повреждение ДНК: AP-сайты (абазические сайты, в которых отсутствует пиримидин или пурин нуклеотид ) и участков, где происходит эксцизионная репарация.

Анализ комет является чрезвычайно чувствительным анализом повреждений ДНК. С этой чувствительностью нужно обращаться осторожно, поскольку она также уязвима для физических изменений, которые могут повлиять на воспроизводимость результатов. По сути, следует избегать всего, что может вызвать повреждение или денатурацию ДНК, за исключением исследуемых факторов. Наиболее распространенной формой анализа является щелочная версия, хотя пока нет окончательного протокола щелочного анализа. Благодаря простой и недорогой настройке его можно использовать в условиях, когда недоступны более сложные анализы.

Приложения

К ним относятся тестирование генотоксичности, биомониторинг человека и молекулярная эпидемиология, экогенотоксикология, а также фундаментальные исследования повреждений и восстановления ДНК.

Фрагментация ДНК сперматозоидов

Кометный анализ может определить степень фрагментации ДНК в сперматозоидах. Степень фрагментации ДНК была связана с результатами экстракорпорального оплодотворения.

Комета была модифицирована для использования со сперматозоидами в качестве инструмента диагностики мужского бесплодия

Для разрушения этих прочно связанных протаминов. белки, чтобы использовать комету для сперматозоидов, требуются дополнительные шаги в протоколе деконденсации.

Ссылки
  1. ^Tice, RR (2000). «Анализ одноклеточного геля / кометы: Руководство по генетическому токсикологическому тестированию in vitro и in vivo». Экологический и молекулярный мутагенез. 35 (3): 206–21. doi : 10.1002 / (SICI) 1098-2280 (2000) 35: 3 <206::AID-EM8>3.0.CO; 2-J. PMID 10737956.
  2. ^Nandhakumar, S; Парасураман, S; Шанмугам, М М; Рао, К. Р.; Чанд, П; Бхат, Б. В. (2011). «Оценка повреждения ДНК с использованием электрофореза в геле одной клетки (анализ комет)». J Pharmacol Pharmacother. 2 (2): 107–11. DOI : 10.4103 / 0976-500X.81903. PMC 3127337. PMID 21772771.
  3. ^Коллинз А. Р. (март 2004 г.). «Кометный тест на повреждение и репарацию ДНК: принципы, применение и ограничения». Мол. Biotechnol. 26 (3): 249–61. doi : 10.1385 / MB: 26: 3: 249. PMID 15004294. S2CID 34355649.
  4. ^Нандхакумар, S; Парасураман, S; Шанмугам, ММ; Рао, КР; Чанд, П; Bhat, BV (апрель 2011 г.). «Оценка повреждения ДНК с использованием электрофореза в геле одной клетки (анализ комет)». J Pharmacol Pharmacother. 2 (2): 107–11. DOI : 10.4103 / 0976-500X.81903. PMC 3127337. PMID 21772771.
  5. ^Пу, Синьчжу; Ван, Цзэминь; Клауниг, Джеймс Э. (2015-08-06). «Щелочной анализ комет для оценки повреждения ДНК в отдельных клетках». Текущие протоколы в токсикологии. 65 : 3.12.1–11. doi : 10.1002 / 0471140856.tx0312s65. ISBN 978-0471140856. ISSN 1934-9262. PMID 26250399. S2CID 6105193.
  6. ^Мёллер, Питер (апрель 2006 г.). «Щелочной анализ комет: к валидации в биомониторинге воздействия ДНК, повреждающего». Фундаментальная и клиническая фармакология и токсикология. 98 (4): 336–345. doi : 10.1111 / j.1742-7843.2006.pto_167.x. ISSN 1742-7835. ПМИД 16623855.
  7. ^Беляев Игорь Юрьевич; Эрикссон, Стефан; Нигрен, Йонас; Торудд, Джеспер; Хармс-Рингдал, Матс (5 августа 1999 г.). «Влияние бромистого этидия на организацию петли ДНК в лимфоцитах человека, измеренное с помощью зависимости аномальной вязкости от времени и электрофореза в геле одной клетки». Biochimica et Biophysica Acta (BBA) - Общие вопросы. 1428 (2–3): 348–356. DOI : 10.1016 / S0304-4165 (99) 00076-8. ISSN 0304-4165. PMID 10434054.
  8. ^Olive, P.L.; Banáth, J. P.; Дюран, Р. Э. (апрель 1990 г.). «Неоднородность в радиационно-индуцированном повреждении и восстановлении ДНК в опухолевых и нормальных клетках, измеренная с помощью« кометного »анализа». Радиационные исследования. 122 (1): 86–94. Bibcode : 1990RadR..122... 86O. DOI : 10.2307 / 3577587. ISSN 0033-7587. JSTOR 3577587. PMID 2320728.
  9. ^Powell, S.; Макмиллан, Т.Дж. (1990-10-01). «Повреждение и восстановление ДНК после лечения ионизирующим излучением». Лучевая терапия и онкология. 19 (2): 95–108. DOI : 10.1016 / 0167-8140 (90) 90123-E. ISSN 0167-8140. PMID 2255771.
  10. ^Воеводска, Мария; Бурачевска, Ивона; Крушевский, Марцин (27.06.2002). «Модифицированный анализ нейтральной кометы: устранение лизиса при высокой температуре и подтверждение анализа с использованием антител к одноцепочечной ДНК». Мутационные исследования. 518 (1): 9–20. doi : 10,1016 / s1383-5718 (02) 00070-0. ISSN 0027-5107. PMID 12063063.
  11. ^Коллинз, Эндрю Р. (1997-04-29). «Кометный анализ: что он может нам сказать?». Мутационные исследования / Фундаментальные и молекулярные механизмы мутагенеза. 375 (2): 183–193. DOI : 10.1016 / S0027-5107 (97) 00013-4. ISSN 0027-5107. PMID 9202728.
  12. ^Gedik, C.M.; Ewen, S.W.; Коллинз, А. Р. (сентябрь 1992 г.). «Электрофорез в геле одной клетки применяется для анализа повреждений УФ-С и его восстановления в клетках человека». Международный журнал радиационной биологии. 62 (3): 313–320. doi : 10.1080 / 09553009214552161. ISSN 0955-3002. PMID 1356133.
  13. ^Теоретические и практические ограничения анализа обсуждаются, например, в Klaude et al. (1996) и Collins et al. (1997).
  14. ^https://www2.le.ac.uk/departments/csmm/.../SCG%20Electrophoresis.pdf
  15. ^Саймон Л., Брунборг Г., Стивенсон М., Латтон Д., МакМанус Дж., Льюис С.Е. (май 2010). «Клиническое значение повреждения ДНК сперматозоидов в исходе вспомогательной репродукции». Hum Reprod. 25 (7): 1594–1608. doi : 10.1093 / humrep / deq103. PMID 20447937.
  16. ^Награджаппа; Гангули, Анутош; Госвами, Уша (2006). «Повреждение ДНК в мужских половых клетках зеленой мидии (Perna viridis) при воздействии табачных изделий». Экотоксикология. 15 (4): 365–369. doi : 10.1007 / s10646-006-0077-1. PMID 16673160. S2CID 13956778.
  17. ^Hughes CM, Lewis SEM, McKelvey-Martin V, Thompson W. Воспроизводимость измерений ДНК сперматозоидов человека с использованием анализа электрофореза в геле одной клетки. Исследование мутаций 1997 374: 261-268.
  18. ^ Доннелли, штат Восточный; McClure, N; Льюис, SEM (1999). «Влияние добавок аскорбата и β-токоферола in vitro на целостность ДНК и индуцированное перекисью водорода повреждение ДНК в сперматозоидах человека». Мутагенез. 14 (5): 505–511. doi : 10.1093 / mutage / 14.5.505. PMID 10473655.
  19. ^Рибас-Майноу Хорди, Агустин Гарсиа-Пейро, Альба Фернандес-Энсинас, Мария Хосе Аменгуаль и Бенет Хорди, разрывы ДНК двухцепочечных сперматозоидов, измерено Анализ комет, связаны с необъяснимым повторным выкидышем в парах без женского фактора
Дополнительная литература
Последняя правка сделана 2021-05-15 06:34:13
Содержание доступно по лицензии CC BY-SA 3.0 (если не указано иное).
Обратная связь: support@alphapedia.ru
Соглашение
О проекте