Микропептид

редактировать
Полипептиды с короткой длиной Микропептиды можно транскрибировать из 5'UTR, малых генов, полицистронных мРНК или неправильно аннотированной днРНК. 413>Микропептиды (также называемые микропротеинами) - это полипептиды длиной менее 100-150 аминокислот, которые кодируются короткими открытыми рамками считывания (кОРС). В этом отношении они отличаются от многих других активных малых полипептидов, которые продуцируются посттрансляционным расщеплением более крупных полипептидов. По размеру микропептиды значительно короче «канонических» белков, которые имеют среднюю длину 330 и 449 аминокислот у прокариот и эукариот соответственно. Иногда микропептиды называют в соответствии с их геномным расположением. Например, транслированный продукт открытой рамки считывания (uORF) может называться кодируемым uORF пептидом (uPEP). У микропептидов отсутствуют N-концевые сигнальные последовательности, что позволяет предположить, что они, вероятно, локализованы в цитоплазме. Однако некоторые микропептиды были обнаружены в других компартментах клетки, на что указывает наличие трансмембранных микропептидов. Они обнаруживаются как у прокариот, так и у эукариот. КОРС, из которых транслируются микропептиды, могут кодироваться в 5 'UTR, малыми генами или полицистронными мРНК. Некоторые гены, кодирующие микропептиды, изначально были неправильно аннотированы как длинные некодирующие РНК (днРНК).

Учитывая их небольшой размер, кОРС изначально не принимали во внимание. Однако сотни тысяч предполагаемых микропептидов были идентифицированы различными методами у множества организмов. Только небольшая часть из них с кодирующим потенциалом получила подтверждение своей экспрессии и функции. Те, которые были функционально охарактеризованы, как правило, играют роль в передаче сигналов клеток, органогенезе и клеточной физиологии. Чем больше обнаруживается микропептидов, тем больше их функций. Одной из регуляторных функций является функция пептопереключателей, которые ингибируют экспрессию нижестоящих кодирующих последовательностей, задерживая рибосомы посредством их прямой или косвенной активации небольшими молекулами.

Содержание
  • 1 Идентификация
    • 1.1 Секвенирование РНК
    • 1.2 Профилирование рибосом (Ribo-Seq)
    • 1.3 Масс-спектрометрия
    • 1.4 Протеогеномные приложения
    • 1.5 Филогенетическая консервация
  • 2 Подтверждение потенциала кодирования белка
    • 2.1 Антитела
    • 2.2 Маркировка с помощью CRISPR -Cas9
    • 2.3 Перевод in vitro
  • 3 Базы данных и репозитории
  • 4 Примеры прокариот
    • 4.1 Escherichia coli (E. coli)
    • 4.2 Salmonella enterica (S. enterica)
    • 4.3 Bacillus subtilis (B. subtilis)
    • 4.4 Staphylococcus aureus (S. aureus)
  • 5 примеров эукариот
    • 5.1 Arabidopsis thaliana (A. thaliana)
    • 5.2 Zea mays (Z. mays)
    • 5.3 Drosophila melanogaster (D. melanogaster)
    • 5.4 Данио rerio (D. rerio)
    • 5.5 Mus musculus (M. musculus)
    • 5.6 Homo sapiens (H. sapiens)
  • 6 Источники
Идентификация

Существуют различные экспериментальные методы для идентификации потенциальных s ORF и продуктов их трансляции. Эти методы полезны только для идентификации кОРС, которая может продуцировать микропептиды, но не для прямой функциональной характеристики.

Секвенирование РНК

Одним из методов обнаружения потенциальных кОРС и, следовательно, микропептидов является секвенирование РНК (RNA-Seq ). RNA-Seq использует секвенирование следующего поколения (NGS), чтобы определить, какие РНК экспрессируются в данной клетке, ткани или организме в определенный момент времени. Этот набор данных, известный как транскриптом, может затем использоваться в качестве ресурса для поиска потенциальных кОРС. Из-за высокой вероятности случайного возникновения кОРС менее 100 а.о. необходимы дальнейшие исследования для определения достоверности данных, полученных с помощью этого метода.

Профилирование рибосом (Ribo-Seq)

Профилирование рибосом используется для выявления потенциальных микропептидов у растущего числа организмов, включая плодовых мушек, рыбок данио, мышей и людей. В одном методе используются такие соединения, как харрингтонин, пуромицин или лактимидомицин, для остановки рибосом в сайтах инициации трансляции. Это указывает, где происходит активный перевод. Ингибиторы удлинения трансляции, такие как эметин или циклогексимид, также можно использовать для получения следов рибосомы, которые с большей вероятностью приведут к транслированной ORF. Если рибосома связана с кОРС или рядом с ней, она предположительно кодирует микропептид.

Масс-спектрометрия

Масс-спектрометрия (MS) является золотым стандартом для идентификации и секвенирования белков. Используя этот метод, исследователи могут определить, действительно ли полипептиды транслируются с кОРС.

Протеогеномные приложения

Протеогеномика объединяет протеомику, геномику и транскиптомику. Это важно при поиске потенциальных микропептидов. Один из методов использования протеогеномики предполагает использование данных RNA-Seq для создания настраиваемой базы данных всех возможных полипептидов. Для получения информации о последовательностях продуктов трансляции проводят жидкостную хроматографию с последующей тандемной масс-спектрометрией (LC-MS / MS). Сравнение транскриптомных и протеомных данных может быть использовано для подтверждения присутствия микропептидов.

Филогенетическая консервация

Филогенетическая консервация может быть полезным инструментом, особенно при просмотре большой базы данных кОРС. Вероятность того, что кОРС приведет к образованию функционального микропептида, более высока, если он сохраняется у многих видов. Однако это не сработает для всех кОРС. Например, те, которые кодируются lncRNA, с меньшей вероятностью будут консервативными, поскольку сами lncRNA не обладают высокой консервативностью последовательности. Необходимы дальнейшие эксперименты, чтобы определить, действительно ли продуцируется функциональный микропептид.

Проверка потенциала кодирования белка

Антитела

Пользовательские антитела, нацеленные на интересующий микропептид, могут быть полезны для количественной оценки экспрессии или определения внутриклеточной локализации. Как и в случае с большинством белков, низкая экспрессия может затруднить обнаружение. Небольшой размер микропептида также может привести к трудностям в разработке эпитопа, из которого нацелено антитело.

Маркировка с помощью CRISPR-Cas9

может использоваться для добавления FLAG / MYC или других небольших пептидные метки к эндогенной кОРС, тем самым создавая слитые белки. В большинстве случаев этот метод выгоден тем, что его можно выполнить быстрее, чем разработка собственного антитела. Он также полезен для микропептидов, для которых нельзя нацелить эпитоп.

Трансляция in vitro

Этот процесс включает клонирование полноразмерной кДНК микропептида в плазмиду, содержащую промотор Т7 или SP6. В этом методе используется бесклеточная система синтеза белка в присутствии S-метионина для получения интересующего пептида. Затем продукты могут быть проанализированы с помощью гель-электрофореза, а S-меченный пептид визуализирован с помощью авторадиографии.

Базы данных и репозитории

Существует несколько репозиториев и баз данных, которые были созданы как для кОРС, так и для микропептидов.. Репозиторий небольших ORF, обнаруженных с помощью профилирования рибосом, можно найти на сайте sORFs.org. Репозиторий предполагаемых кодируемых кОРС пептидов в Arabidopsis thaliana можно найти в ARA-PEPs. Базу данных малых белков, особенно кодируемых некодирующими РНК, можно найти на SmProt.

Примеры прокариот

На сегодняшний день большинство микропептидов идентифицировано в прокариотических организмах. Хотя большинство из них еще предстоит полностью охарактеризовать, многие из них, по-видимому, имеют решающее значение для выживания этих организмов. Из-за своего небольшого размера прокариоты особенно восприимчивы к изменениям в окружающей их среде, и поэтому они разработали методы, обеспечивающие их существование.

Escherichia coli (E. coli)

Микропептиды, экспрессируемые в E. coli, служат примером бактериальной адаптации к окружающей среде. Большинство из них было разделено на три группы: лидерные пептиды, рибосомные белки и токсичные белки. Белки-лидеры регулируют транскрипцию и / или трансляцию белков, участвующих в метаболизме аминокислот, когда аминокислот не хватает. Рибосомные белки включают L36 (rpmJ) и L34 (rpmH), два компонента 50S субъединицы рибосомы. Токсичные белки, такие как ldrD, токсичны на высоких уровнях и могут убивать клетки или подавлять рост, что снижает жизнеспособность клетки-хозяина.

Salmonella enterica (S. enterica)

In S.. enterica фактор вирулентности MgtC участвует в адаптации к средам с низким содержанием магния. Гидрофобный пептид MgrR связывается с MgtC, вызывая его расщепление под действием протеазы FtsH.

Bacillus subtilis (B. subtilis)

Микропептид Sda из 46 аминокислотных остатков, экспрессируемый B. subtilis, подавляет споруляцию при нарушении инициации репликации. Ингибируя гистидинкиназу KinA, Sda предотвращает активацию фактора транскрипции Spo0A, который необходим для споруляции.

Staphylococcus aureus (S. aureus)

У S. aureus есть группа микропептидов, 20-22 а.о., которые выделяются во время инфекции хозяина, разрушая мембраны нейтрофилов, вызывая лизис клеток. Эти микропептиды позволяют бактерии избежать деградации под действием основных защитных сил иммунной системы человека.

Примеры эукариот

Микропептиды были обнаружены в эукариотических организмах от Arabidopsis thaliana до человека. Они играют разнообразные роли в развитии тканей и органов, а также в поддержании и функционировании после полного развития. Хотя многие из них еще не охарактеризованы функционально и, вероятно, еще предстоит открыть, ниже приводится краткое изложение недавно идентифицированных функций эукариотических микропептидов.

Arabidopsis thaliana (A. thaliana)

Ген POLARIS (PLS) кодирует микропептид из 36 аминокислотных остатков. Это необходимо для правильного формирования сосудистого рисунка листка и расширения клеток в корне. Этот микропептид взаимодействует с онтогенетическими белками PIN, образуя критическую сеть для гормонального взаимодействия между ауксином, этиленом и цитокинином.

ROTUNDIFOLIA (ROT4) у A. thaliana кодирует пептид из 53 аминокислот, который локализуется на плазматической мембране клетки листа. Механизм функции ROT4 не совсем понятен, но мутанты имеют короткие округлые листья, что указывает на то, что этот пептид может играть важную роль в морфогенезе листа.

Zea mays (Z. mays)

Brick1 (Brk1) кодирует микропептид из 76 аминокислот, который является высококонсервативным как у растений, так и у животных. У Z. mays было обнаружено, что он участвует в морфогенезе эпителия листа, способствуя множественным актин-зависимым событиям поляризации клеток в развивающемся эпидермисе листа. Zm401p10 представляет собой микропептид из 89 аминокислотных остатков, который играет роль в нормальном развитии пыльцы тапетума. После митоза он также играет важную роль в деградации тапетума. Zm908p11 представляет собой микропептид длиной 97 а.о., кодируемый геном Zm908, который экспрессируется в зрелых пыльцевых зернах. Он локализуется в цитоплазме пыльцевых трубок, где способствует их росту и развитию.

Drosophila melanogaster (D. melanogaster)

Эволюционно законсервированный ген полированного риса (pri), известный как tarsal -less (tal) у D. melanogaster участвует в дифференцировке эпидермиса. Этот полицистронный транскрипт кодирует четыре похожих пептида, длина которых составляет от 11 до 32 аминокислот. Они работают, чтобы усечь фактор транскрипции Shavenbaby (Svb). Это превращает Svb в активатор, который непосредственно регулирует экспрессию целевых эффекторов, включая миниатюрные (m) и бритоидные (sha), которые вместе ответственны за образование трихома.

Danio rerio (D. rerio)

Ген Toddler (tdl) считается важным для эмбриогенеза и специфически экспрессируется на поздних стадиях бластулы и гаструлы. Во время гаструляции это имеет решающее значение для стимулирования интернализации и движения мезэндодермальных клеток, направленного на анимальный полюс. После гаструляции он выражается в латеральной мезодерме, энтодерме, а также в передней и задней хорде. Несмотря на то, что она аннотирована как днРНК у рыбок данио, мышей и человека, кОРС из 58 аминокислотных остатков оказалась высококонсервативной у позвоночных.

Mus musculus (M. musculus)

(Mln) кодируется геном, первоначально аннотированным как днРНК. Mln экспрессируется во всех 3 типах скелетных мышц и работает аналогично микропептидам фосфоламбан (Pln) в сердечной мышце и сарколипин (Sln) в медленных (тип I) скелетных мышцах.. Эти микропептиды взаимодействуют с Са-АТФазой саркоплазматического ретикулума (SERCA), мембранным насосом, ответственным за регулирование поглощения кальция в саркоплазматическом ретикулуме (SR). Ингибируя поглощение Са в SR, они вызывают расслабление мышц. Точно так же гены (ELN) и (ALN) кодируют трансмембранные микропептиды, которые содержат мотив связывания SERCA и консервативны у млекопитающих.

(Mymx) кодируется геном Gm7325, мышечно-специфическим пептидом, 84 а.о. в длину, что играет роль во время эмбриогенеза в слиянии и формировании скелетных мышц. Он локализуется на плазматической мембране, связываясь с белком слияния мембран (Mymk). У людей ген, кодирующий Mymx, аннотируется как не охарактеризованный LOC101929726. Ортологи также обнаружены в геномах черепах, лягушек и рыб.

Homo sapiens (H. sapiens)

У человека (неаннотированный диссоциирующий полипептид P-тельца) - 68 аминокислотных остатков. микропептид был обнаружен в длинно промежуточной некодирующей РНК (lincRNA) LINC01420. Он имеет высокую сохранность последовательности у млекопитающих и локализуется в Р-тельцах. Он обогащает белки, связанные с декапированием 5 ’мРНК. Считается, что он напрямую взаимодействует с (EDC4).

Ген C7orf49, консервативный у млекопитающих, при альтернативном сплайсинге предсказывается, что он продуцирует три микропептида. Ранее было обнаружено, что МРТ-1 является модулятором ретровирусной инфекции. Второй предсказанный микропептид, MRI-2, может быть важным в негомологичном соединении концов (NHEJ) двухцепочечных разрывов ДНК. В экспериментах по коиммунопреципитации МРТ-2 связывался с Ku70 и Ku80, двумя субъединицами Ku, которые играют важную роль в пути NHEJ.

Микропептид из 24 аминокислот, Humanin (HN), взаимодействует с индуцирующим апоптоз белком Bcl2-ассоциированным X-белком (Bax). В активном состоянии Bax претерпевает конформационные изменения, которые открывают домены, нацеленные на мембрану. Это заставляет его перемещаться из цитозоля на митохондриальную мембрану, где он вставляет и высвобождает апоптогенные белки, такие как цитохром c. Взаимодействуя с Bax, HN предотвращает нацеливание Bax на митохондрии, тем самым блокируя апоптоз.

Было обнаружено, что микропептид 90aa, ‘’ или SPAAR, кодируется днРНК LINC00961. Он сохраняется у человека и мыши и локализуется в поздних эндосомах / лизосомах. SPAAR взаимодействует с четырьмя субъединицами комплекса v-АТФаза, ингибируя транслокацию mTORC1 на поверхность лизосомы, где он активируется. Подавление этого микропептида делает возможной активацию mTORC1 за счет стимуляции аминокислот, способствуя регенерации мышц.

Ссылки

Эта статья была адаптирована из следующего источника под лицензией CC BY 4.0 () (отчеты рецензента ): Мария Э. Соуза; Майкл Х. Фаркас (2018), «Микропептид», PLOS Genetics, 14 (12): e1007764, doi : 10.1371 / JOURNAL.PGEN.1007764, PMC 6292567, PMID 30543625, Wikidata Q60017699

  1. ^ Crappé J, Van Criekinge W, Menschaert G ( 2014). «Маленькие вещи делают большие дела: краткое изложение генов, кодирующих микропептиды». Открытая протеомика EuPA. 3 : 128–137. doi : 10.1016 / j.euprot.2014.02.006.
  2. ^ Makarewich CA, Olson EN (сентябрь 2017 г.). «Разработка микропептидов». Тенденции в клеточной биологии. 27 (9): 685–696. doi : 10.1016 / j.tcb.2017.04.006. PMC 5565689. PMID 28528987.
  3. ^Guillén G, Díaz-Camino C, Loyola-Torres CA, Aparicio-Fabre R, Hernández-López A, Díaz-Sánchez M, Sanchez F (2013). «Подробный анализ предполагаемых генов, кодирующих небольшие белки в геномах бобовых». Границы науки о растениях. 4 : 208. doi : 10.3389 / fpls.2013.00208. PMC 3687714. PMID 23802007.
  4. ^Хашимото Ю., Кондо Т., Кагеяма Ю. (июнь 2008 г.). «В центре внимания лилипуты: новый класс малых пептидных генов в морфогенезе». Развитие, рост и дифференциация. 50 Приложение 1: S269–76. doi : 10.1111 / j.1440-169x.2008.00994.x. PMID 18459982.
  5. ^Чжан Дж. (Март 2000 г.). «Распределение длин белков для трех областей жизни». Тенденции в генетике. 16 (3): 107–9. doi : 10.1016 / s0168-9525 (99) 01922-8. PMID 10689349.
  6. ^Rothnagel J, Menschaert G (май 2018 г.). «Короткие открытые рамки считывания и кодированные ими пептиды». Протеомика. 18 (10): e1700035. doi : 10.1002 / pmic.201700035. PMID 29691985.
  7. ^ Anderson DM, Anderson KM, Chang CL, Makarewich CA, Nelson BR, McAnally JR, Kasaragod P, Shelton JM, Liou J, Bassel-Duby R, Olson EN (февраль 2015). «Микропептид, кодируемый предполагаемой длинной некодирующей РНК, регулирует работу мышц». Cell. 160 (4): 595–606. doi : 10.1016 / j.cell.2015.01.009. PMC 4356254. PMID 25640239.
  8. ^ Би П., Рамирес-Мартинес А., Ли Х., Каннавино Дж., Маканалли Дж. Р., Шелтон Дж. М., Санчес-Ортис Е., Бассель-Дуби Р., Олсон Э. Н. (апрель 2017 г.). «Контроль мышечного образования с помощью миомиксера с микропептидами слияния». Наука. 356 (6335): 323–327. doi : 10.1126 / science.aam9361. PMC 5502127. PMID 28386024.
  9. ^ Аликс Э., Blanc-Potard AB (февраль 2008 г.). «Пептидная деградация фактора вирулентности Salmonella MgtC». Журнал EMBO. 27 (3): 546–57. doi : 10.1038 / sj.emboj.7601983. PMC 2241655. PMID 18200043.
  10. ^ Буркхолдер В.Ф., Курцер И., Гроссман А.Д. (январь 2001 г.). «Белки инициации репликации регулируют контрольную точку развития Bacillus subtilis». Cell. 104 (2): 269–79. doi : 10.1016 / s0092-8674 (01) 00211-2. HDL : 1721.1 / 83916. PMID 11207367.
  11. ^ Эндрюс С.Дж., Ротнагель Дж.А. (март 2014 г.). «Новые доказательства функциональных пептидов, кодируемых короткими открытыми рамками считывания». Обзоры природы. Генетика. 15 (3): 193–204. doi : 10.1038 / nrg3520. PMID 24514441.
  12. ^ Bazzini AA, Johnstone TG, Christiano R, Mackowiak SD, Obermayer B, Fleming ES, Vejnar CE, Lee MT, Rajewsky N, Walther TC, Giraldez AJ (май 2014 г.). «Идентификация малых ORF у позвоночных с использованием следов рибосом и эволюционной консервации». Журнал EMBO. 33 (9): 981–93. doi : 10.1002 / embj.201488411. PMC 4193932. PMID 24705786.
  13. ^Ingolia NT, Brar GA, Stern-Ginossar N, Harris MS, Talhouarne GJ, Jackson SE, Wills MR, Weissman JS (сентябрь 2014 г.). «Профилирование рибосом выявляет повсеместную трансляцию вне аннотированных генов, кодирующих белок». Сотовые отчеты. 8 (5): 1365–79. doi : 10.1016 / j.celrep.2014.07.045. PMC 4216110. PMID 25159147.
  14. ^Stern-Ginossar N, Ingolia NT (ноябрь 2015 г.). «Профилирование рибосом как инструмент для расшифровки вирусной сложности». Ежегодный обзор вирусологии. 2 (1): 335–49. doi : 10.1146 / annurev-virology-100114-054854. PMID 26958919.
  15. ^"sORFs.org: хранилище малых ORF, идентифицированных с помощью профилирования рибосом". sorfs.org. Проверено 14 декабря 2018 г.
  16. ^Olexiouk V, Crappé J, Verbruggen S, Verhegen K, Martens L, Menschaert G (январь 2016 г.). "sORFs.org: хранилище небольших ORF, идентифицированных с помощью профилирования рибосом". Исследования нуклеиновых кислот. 44 (D1): D324–9. doi : 10.1093 / nar / gkv1175. PMC 4702841. PMID 26527729.
  17. ^«ARA-PEP: репозиторий предполагаемых кОРС-кодируемых пептидов в Arabidopsis thaliana». www.biw.kuleuven.be. Проверено 14 декабря 2018 г.
  18. ^Хазарика Р.Р., Де Конинк Б., Ямамото Л. Р., Мартин Л. Р., Камму Б. П., ван Ноорт В. (январь 2017 г.). «ARA-PEP: хранилище предполагаемых пептидов, кодируемых sORF, в Arabidopsis thaliana». BMC Bioinformatics. 18 (1): 37. doi : 10.1186 / s12859-016-1458-y. PMC 5240266. PMID 28095775.
  19. ^«SmProt: база данных малых белков, кодируемых аннотированными кодирующими и некодирующими локусами РНК». bioinfo.ibp.ac.cn. Дата обращения 14 декабря 2018.
  20. ^Хао И, Чжан Л., Ню И, Цай Т., Ло Дж, Хе С, Чжан Б., Чжан Д., Цинь И, Ян Ф, Чен Р. (июль 2018 г.). «SmProt: база данных малых белков, кодируемых аннотированными кодирующими и некодирующими локусами РНК». Брифинги по биоинформатике. 19 (4): 636–643. doi : 10.1093 / bib / bbx005. PMID 28137767.
  21. ^Hemm MR, Paul BJ, Schneider TD, Storz G, Rudd KE (декабрь 2008 г.). «Малые мембранные белки, обнаруженные с помощью сравнительной геномики и моделей сайтов связывания рибосом». Молекулярная микробиология. 70 (6): 1487–501. doi : 10.1111 / j.1365-2958.2008.06495.x. PMC 2614699. PMID 19121005.
  22. ^Wang R, Braughton KR, Kretschmer D, Bach TH, Queck SY, Li M, Kennedy AD, Dorward DW, Klebanoff SJ, Peschel A, DeLeo FR, Otto M ( Декабрь 2007 г.). «Идентификация новых цитолитических пептидов в качестве ключевых детерминант вирулентности для ассоциированного с сообществом MRSA». Природная медицина. 13 (12): 1510–4. doi : 10,1038 / нм1656. PMID 17994102.
  23. ^Hemm MR, Paul BJ, Miranda-Ríos J, Zhang A, Soltanzad N, Storz G (январь 2010 г.). «Белки малого стрессового ответа в Escherichia coli: белки, пропущенные классическими протеомными исследованиями». Журнал бактериологии. 192 (1): 46–58. DOI : 10.1128 / jb.00872-09. PMC 2798279. PMID 19734316.
  24. ^Casson SA, Chilley PM, Topping JF, Evans IM, Souter MA, Lindsey K (август 2002 г.). «Ген POLARIS Arabidopsis кодирует предсказанный пептид, необходимый для правильного роста корней и формирования сосудистого паттерна листьев». Растительная клетка. 14 (8): 1705–21. doi : 10.1105 / tpc.002618. PMC 151460. PMID 12172017.
  25. ^Чилли П.М., Кассон С.А., Тарковски П., Хокинс Н., Ван К.Л., Хасси П.Дж., Бил М., Эккер Дж.Р., Сандберг Г.К., Линдси К. (ноябрь 2006 г.). «Пептид POLARIS Arabidopsis регулирует транспорт ауксина и рост корней посредством воздействия на передачу сигналов этилена». Растительная клетка. 18 (11): 3058–72. doi : 10.1105 / tpc.106.040790. PMC 1693943. PMID 17138700.
  26. ^Лю Дж., Мехди С., Топпинг Дж., Фримл Дж., Линдси К. (2013). «Взаимодействие PLS и PIN и гормональные перекрестные помехи в развитии корня Arabidopsis». Границы науки о растениях. 4 : 75. doi : 10.3389 / fpls.2013.00075. PMC 3617403. PMID 23577016.
  27. ^Нарита Н.Н., Мур С., Хоригучи Дж., Кубо М., Демура Т., Фукуда Х., Гудрич Дж., Цукая Х. (май 2004 г.). «Сверхэкспрессия нового малого пептида ROTUNDIFOLIA4 снижает пролиферацию клеток и изменяет форму листа у Arabidopsis thaliana». Заводской журнал. 38 (4): 699–713. doi : 10.1111 / j.1365-313x.2004.02078.x. PMID 15125775.
  28. ^Франк MJ, Смит LG (май 2002 г.). «Небольшой новый белок, высоко консервативный у растений и животных, способствует поляризованному росту и делению эпидермальных клеток листьев кукурузы». Текущая биология. 12 (10): 849–53. doi : 10.1016 / s0960-9822 (02) 00819-9. PMID 12015123.
  29. ^Ван Д., Ли Ц., Чжао К., Чжао Л., Ван М., Чжу Д., Ао Г, Ю Дж (2009). «Zm401p10, кодируемый специфическим для пыльника геном с короткими открытыми рамками считывания, необходим для дегенерации тапетума и развития пыльника у кукурузы». Функциональная биология растений. 36 (1): 73. doi : 10.1071 / fp08154.
  30. ^Дун Х, Ван Д, Лю П, Ли Ц, Чжао Кью, Чжу Д, Ю Дж. (Май 2013). «Zm908p11, кодируемый геном с короткой открытой рамкой считывания (кОРС), функционирует при росте пыльцевой трубки как профилиновый лиганд кукурузы». Журнал экспериментальной ботаники. 64 (8): 2359–72. doi : 10.1093 / jxb / ert093. PMC 3654424. PMID 23676884.
  31. ^Кондо Т., Плаза S, Занет Дж., Бенраба Э., Валенти П., Хашимото И., Кобаяши С., Пайре Ф, Кагеяма Y (июль 2010 г.). «Малые пептиды переключают транскрипционную активность Shavenbaby во время эмбриогенеза дрозофилы». Наука. 329 (5989): 336–9. doi : 10.1126 / science.1188158. PMID 20647469.
  32. ^Паули А., Норрис М.Л., Вален Е., Чу Г.Л., Ганьон Дж. А., Циммерман С., Митчелл А., Ма Дж., Дубрул Дж., Рейон Д., Цай С. К., Джунг Дж. К., Сагательян А., Шир А.Ф. (февраль 2014 г.). «Малыш: эмбриональный сигнал, который способствует движению клеток через рецепторы апелина». Наука. 343 (6172): 1248636. doi : 10.1126 / science.1248636. PMC 4107353. PMID 24407481.
  33. ^Chng SC, Ho L, Tian J, Reversade B (декабрь 2013 г.). «ЭЛАБЕЛА: гормон, необходимый для сигналов развития сердца через рецептор апелина». Клетка развития. 27 (6): 672–80. doi : 10.1016 / j.devcel.2013.11.002. PMID 24316148.
  34. ^Д'Лима Н.Г., Ма Дж., Винклер Л., Чу К., Лох К.Х., Корпуз Е.О., Будник Б.А., Ликке-Андерсен Дж., Сагателян А., Славофф С.А. (февраль 2017 г.). «Человеческий микробелок, который взаимодействует с комплексом декапирования мРНК». Природа Химическая биология. 13 (2): 174–180. doi : 10.1038 / nchembio.2249. PMC 5247292. PMID 27918561.
  35. ^Slavoff SA, Heo J, Budnik BA, Hanakahi LA, Saghatelian A (апрель 2014 г.). «Человеческий полипептид, кодирующий короткую открытую рамку считывания (кОРС), который стимулирует соединение концов ДНК». Журнал биологической химии. 289 (16): 10950–7. doi : 10.1074 / jbc.c113.533968. PMC 4036235. PMID 24610814.
  36. ^Гуо Б., Чжай Д., Кабесас Э., Уэлш К., Нураини С., Саттертуэйт А.С., Рид Дж.С. (май 2003 г.). «Пептид гуманина подавляет апоптоз, препятствуя активации Bax». Природа. 423 (6938): 456–61. doi : 10.1038 / nature01627. PMID 12732850.
  37. ^Мацумото А., Пашут А., Мацумото М., Ямасита Р., Фунг Дж., Монтелеоне Е., Сагателиан А., Накаяма К.И., Клохесси Дж. Г., Пандольфи П.П. (январь 2017 г.). «mTORC1 и регенерация мышц регулируются полипептидом SPAR, кодируемым LINC00961». Природа. 541 (7636): 228–232. doi : 10.1038 / nature21034. PMID 28024296.
Последняя правка сделана 2021-05-30 10:07:27
Содержание доступно по лицензии CC BY-SA 3.0 (если не указано иное).
Обратная связь: support@alphapedia.ru
Соглашение
О проекте