Жидкостная хроматография – масс-спектрометрия

редактировать
Методика аналитической химии
Жидкостная хроматография – масс-спектрометрия
Bruker Amazon Speed ​​ETD ЖХМС с ионной ловушкой и интерфейсом ESI
АкронимЖХМС
КлассификацияХроматография. Масс-спектрометрия
Аналитыорганические молекулы. биомолекулы
ПроизводителиAgilent. Bruker. PerkinElmer. SCIEX. Shimadzu Scientific. Thermo Fisher Scientific. Waters Corporation
Другие методы
СвязанныеГазовая хроматография-масс-спектрометрия

Жидкостная хроматография-масс-спектрометрия (ЖХ – МС ) - это метод аналитической химии, сочетающий в себе возможности физического разделения жидкостной хроматографии (или ВЭЖХ ) с возможностями масс-анализа масс-спектрометрии (МС). Сопряженная хроматография - МС-системы популярны в химическом анализе, поскольку индивидуальные возможности каждого метода усиливаются синергетически. В то время как жидкостная хроматография разделяет смеси, состоящие из нескольких компонентов, масс-спектрометрия обеспечивает структурную идентичность отдельных компонентов с высокой молекулярной специфичностью и чувствительностью обнаружения. Этот тандемный метод можно использовать для анализа биохимических, органических и неорганических соединений, обычно обнаруживаемых в сложных образцах экологического и биологического происхождения. Таким образом, ЖХ-МС может применяться в широком диапазоне секторов, включая биотехнологию, мониторинг окружающей среды, пищевая промышленность и фармацевтика, агрохимия и косметика индустрии.

Помимо устройств жидкостной хроматографии и масс-спектрометрии, система ЖХ-МС содержит интерфейс, который эффективно переносит разделенные компоненты из колонки ЖХ в МС. ионный источник. Интерфейс необходим, потому что устройства LC и MS принципиально несовместимы. Хотя подвижная фаза в системе ЖХ представляет собой жидкость под давлением, анализаторы МС обычно работают в высоком вакууме (около 10 Торр / 10 дюймов ртутного столба ). Таким образом, невозможно непосредственно закачивать элюат из колонки ЖХ в источник МС. В целом, интерфейс представляет собой механически простую часть системы ЖХ-МС, которая передает максимальное количество аналита, удаляет значительную часть подвижной фазы используется в ЖХ и сохраняет химическую идентичность продуктов хроматографии (химически инертный). Как правило, интерфейс не должен влиять на эффективность ионизации и вакуумные условия системы МС. В настоящее время наиболее широко применяемые интерфейсы ЖХ-МС основаны на стратегии ионизации при атмосферном давлении (API), такие как ионизация электрораспылением (ESI), химическая ионизация при атмосферном давлении (APCI) и фотоионизация при атмосферном давлении (APPI). Эти интерфейсы стали доступны в 1990-х годах после двух десятилетий исследований. и процесс разработки.

Содержание

  • 1 История ЖХ-МС
    • 1.1 Интерфейс с подвижным ремнем
    • 1.2 Интерфейс для прямого ввода жидкости
    • 1.3 Интерфейс с термораспылением
    • 1.4 Интерфейсы на основе FAB
  • 2 Жидкостная хроматография
  • 3 Масс-спектрометрия
  • 4 Интерфейсы
    • 4.1 Ионизация электрораспылением (ESI)
    • 4.2 Химическая ионизация при атмосферном давлении (APCI)
    • 4.3 Фотоионизация при атмосферном давлении (APPI)
  • 5 Применения
    • 5.1 Фармакокинетика
    • 5.2 Протеомика / метаболомика
    • 5.3 Разработка лекарств
  • 6 См. Также
  • 7 Ссылки
  • 8 Дополнительная литература

История ЖХ-МС

сочетание хроматографии с МС - хорошо разработанная стратегия химического анализа, восходящая к 1950-м годам. Газовая хроматография (ГХ) - МС была впервые представлена ​​в 1952 году, когда А. Т. Джеймс и А. Дж. П. Мартин пытались разработать тандемные методы разделения - масс-анализа. В ГХ аналиты элюируются из разделительной колонки в виде газа, и связь с ионными источниками электронной ионизации (EI ) или химической ионизации (CI ) в системе МС была технически более простой вызов. Из-за этого разработка систем ГХ-МС была быстрее, чем ЖХ-МС, и такие системы были впервые коммерциализированы в 1970-х годах. Разработка систем ЖХ-МС заняла больше времени, чем ГХ-МС, и была напрямую связана с разработкой соответствующих интерфейсов. В. Л. Тальрозе с сотрудниками начали разработку ЖХ-МС в начале 1970-х годов, когда они впервые использовали капилляры для соединения колонок ЖХ и источников ионов МС. Подобная стратегия была исследована Маклафферти и сотрудниками в 1973 году. Это был первый и наиболее очевидный способ сочетания ЖХ с МС, известный как интерфейс капиллярного входа. Этот первый интерфейс для ЖХ-МС имел те же возможности анализа, что и ГХ-МС, и был ограничен довольно летучими аналитами и неполярными соединениями с низкой молекулярной массой (ниже 400 Да). На входе в капилляр испарение подвижной фазы внутри капилляра было одной из основных проблем. В первые годы развития ЖХ-МС в качестве альтернативных вариантов сочетания были предложены оперативные и автономные альтернативы. Как правило, автономное связывание включало сбор фракций, выпаривание растворителя и перенос аналитов на МС с использованием зондов. Автономный процесс обработки аналита отнимал много времени, и при этом существовал риск загрязнения пробы. Вскоре стало понятно, что для анализа сложных смесей потребуется разработка полностью автоматизированного решения для соединения в режиме реального времени в ЖХ-МС.

Интерфейс подвижного ремня

Интерфейс подвижного ремня (MBI) был разработан в 1977 году. Этот интерфейс представлял собой бесконечную движущуюся ленту, в которую поступал поток из колонки LC. На ленте растворитель выпаривали путем осторожного нагревания и эффективного отвода паров растворителя при пониженном давлении в двух вакуумных камерах. После удаления жидкой фазы аналиты десорбируются с ленты и мигрируют в источник ионов МС для анализа. MBI успешно использовался для приложений ЖХ-МС между 1978 и 1990 годами, поскольку он позволял соединять ЖХ с приборами МС с использованием ионных источников EI, CI и бомбардировки быстрыми атомами (FAB). Наиболее распространенными системами МС, подключенными интерфейсами MBI к колонкам ЖХ, были инструменты магнитный сектор и квадрополь. Интерфейсы MBI для ЖХ-МС позволили широко применять МС для анализа лекарств, пестицидов, стероидов, алкалоидов и полициклических ароматических углеводородов. Этот интерфейс больше не используется из-за его механической сложности и трудностей, связанных с заменой ремня. Интерфейсы пучка частиц широко использовались в MBI для ЖХ-МС в 1988 году.

Интерфейс прямого ввода жидкости

Интерфейс прямого ввода жидкости (DLI) был разработан в 1980 году. как решение проблемы испарения жидкости внутри входной поверхности капилляра. В DLI небулайзер использовался для дезинтеграции части сточных вод, выходящих из колонки. Небольшая диафрагма использовалась для образования струи жидкости, состоящей из мелких капель, которые затем сушились в камере десольватации. Капиллярная колонка с микрокапилляром использовалась для переноса распыленного жидкого продукта в источник ионов МС. Аналиты были ионизированы с использованием источника химической ионизации с добавлением растворителя, в котором растворители LC выступали в качестве газов-реагентов. Чтобы использовать этот интерфейс, необходимо было разделить поток, выходящий из колонки для ЖХ, потому что только небольшая часть вытекающего потока (от 10 до 50 мкл / мин из 1 мл / мин) могла быть проанализирована в оперативном режиме без нарушения МС. вакуум. Одной из основных проблем интерфейса DLI было частое засорение отверстий диафрагмы. Интерфейс DLI использовался между 1982 и 1985 годами для анализа пестицидов, кортикостероидов, метаболитов в моче лошади, эритромицина и витамина B 12. Однако этот интерфейс был заменен интерфейсом термораспыления, который устранил ограничения скорости потока и проблемы, связанные с засорением диафрагм.

Интерфейс термораспыления

Интерфейс термораспыления (TSP) был разработан в 1983 г. Вестальные лаборатории Хьюстонского университета. Интерфейс явился результатом долгосрочного исследовательского проекта, направленного на поиск интерфейса ЖХ-МС, способного обрабатывать высокие скорости потока (1 мл / мин) и избежать разделения потока в интерфейсах DLI. Интерфейс TSP состоял из нагретого зонда, камеры десольватации и ионообменного скиммера. Выходящий поток ЖК проходил через нагретый зонд и появлялся в виде струи пара и мелких капель, текущих в камеру десольватации при низком давлении. Ионизация растворенных веществ происходила путем прямого испарения или ион-молекулярных реакций, вызванных растворителем. Этот интерфейс был способен обрабатывать до 2 мл / мин элюата из колонки для ЖХ и эффективно вводил его в вакуумную систему МС. TSP также больше подходит для применений ЖХ-МС, включающих обращенно-фазовую жидкостную хроматографию (RT-LC). Система TSP выполняет двойную функцию: интерфейс и источник химической ионизации, опосредованный растворителем. Со временем механическая сложность TSP упростилась, и этот интерфейс стал популярным как первый идеальный интерфейс ЖХ-МС для фармацевтических приложений, включающий анализ лекарств, метаболитов, конъюгатов, нуклеозидов, пептиды, натуральные продукты и пестициды. Внедрение TSP ознаменовало собой значительное улучшение систем ЖХ-МС и было наиболее широко применяемым интерфейсом до начала 1990-х годов, когда его начали заменять интерфейсы с ионизацией при атмосферном давлении (API).

FAB Интерфейсы на основе

Интерфейсы frit FAB и непрерывный поток-FAB (CF-FAB) были разработаны в 1985 и 1986 годах соответственно. Оба интерфейса были похожи, но они отличались тем, что в первом использовался зонд из пористой фритты в качестве соединительного канала, а в CF-FAB использовался наконечник зонда. Исходя из этого, CF-FAB оказался более успешным в качестве интерфейса ЖХ-МС и был полезен для анализа нелетучих и термолабильных соединений. В этих границах раздела выходящий поток ЖК проходил через фритту или каналы CF-FAB, образуя однородную жидкую пленку на конце. Там жидкость бомбардировалась ионными пучками или атомами высоких энергий (быстрый атом). Для стабильной работы интерфейсы на основе FAB могли обрабатывать потоки жидкости всего 1–15 мкл, а также ограничивались микрокапиллярными и капиллярными колонками. Для использования в источниках ионизации FAB MS интересующие аналиты должны быть смешаны с матрицей (например, глицерином), которую можно добавить до или после разделения в колонке для ЖХ. Интерфейсы на основе FAB широко использовались для характеристики пептидов, но потеряли применимость с появлением интерфейсов на основе электрораспыления в 1988 году.

Жидкостная хроматография

Схема системы ЖХ-МС

Жидкостная хроматография - это метод физического разделения, при котором компоненты жидкой смеси распределяются между двумя несмешивающимися фазами, т. Е. Неподвижной и подвижной. Практику ЖХ можно разделить на пять категорий: адсорбционная хроматография, распределительная хроматография, ионообменная хроматография, эксклюзионная хроматография и аффинная хроматография. Среди них наиболее широко используемым вариантом является режим с обращенной фазой (RP) метода распределительной хроматографии, который использует неполярную (гидрофобную) неподвижную фазу и полярную подвижную фазу. В обычных применениях подвижная фаза представляет собой смесь воды и других полярных растворителей (например, метанола, изопропанола и ацетонитрила), а неподвижную матрицу получают присоединением длинноцепочечных алкильных групп (например, н-октадецила или C 18) на поверхность частиц диоксида кремния диаметром 5 мкм неправильной или сферической формы.

В ВЭЖХ обычно 20 мкл исследуемого образца вводят в поток подвижной фазы, подаваемый насосом высокого давления.. Подвижная фаза, содержащая аналиты, проникает через слой неподвижной фазы в определенном направлении. Компоненты смеси разделяются в зависимости от их химического сродства с подвижной и неподвижной фазами. Разделение происходит после повторных стадий сорбции и десорбции, происходящих, когда жидкость взаимодействует с неподвижным слоем. Жидкий растворитель (подвижная фаза) подается под высоким давлением (до 400 бар или 300 000 торр) в насадочную колонну, содержащую неподвижную фазу. Высокое давление необходимо для достижения постоянной скорости потока для воспроизводимых хроматографических экспериментов. В зависимости от разделения между подвижной и стационарной фазами компоненты пробы будут вытекать из колонки в разное время. Колонна является наиболее важным элементом системы ЖХ и спроектирована так, чтобы выдерживать высокое давление жидкости. Обычные колонки для ЖХ имеют длину 100–300 мм, внешний диаметр 6,4 мм (1/4 дюйма) и внутренний диаметр 3,0 - 4,6 мм. Для применений, связанных с ЖХ-МС, длина хроматографических колонок может быть короче (30–50 мм) с частицами насадки диаметром 3–5 мкм. В дополнение к традиционной модели, другие колонки для ЖХ представляют собой модели с узким проходом, микрокапиллярной, микрокапиллярной и нано-ЖК. Эти колонки имеют меньший внутренний диаметр, обеспечивают более эффективное разделение и обрабатывают потоки жидкости менее 1 мл / мин (обычная скорость потока). Для повышения эффективности разделения и разрешения пиков вместо ВЭЖХ можно использовать жидкостную хроматографию сверхвысокого качества (UPLC). В этом варианте ЖХ используются колонки, заполненные более мелкими частицами кремнезема (диаметром ~ 1,7 мкм), и требуется более высокое рабочее давление в диапазоне от 310 000 до 775 000 торр (от 6000 до 15 000 фунтов на кв. Дюйм).

Масс-спектрометрия

ЖХ-МС спектр каждого разрешенного пика

Масс-спектрометрия (МС) - это аналитический метод, который измеряет отношение массы к заряду (m / z) заряженных частиц (ионов). Хотя существует много различных типов масс-спектрометров, все они используют электрические или магнитные поля для управления движением ионов, образующихся из интересующего аналита, и определения их m / z. Основными компонентами масс-спектрометра являются ионный источник, масс-анализатор, детектор, а также информационная и вакуумная системы. Источник ионов - это место, где компоненты образца, введенные в систему МС, ионизируются с помощью электронных лучей, фотонных лучей (УФ-лучей ), лазерных лучей. или коронный разряд. В случае ионизации электрораспылением источник ионов перемещает ионы, существующие в жидком растворе, в газовую фазу. Источник ионов преобразует и фрагментирует нейтральные молекулы образца в ионы газовой фазы, которые отправляются в масс-анализатор. В то время как масс-анализатор применяет электрическое и магнитное поля для сортировки ионов по их массе, детектор измеряет и усиливает ионный ток для вычисления содержания каждого иона с разрешенной массой. Для создания спектра масс, который человеческий глаз может легко распознать, система данных записывает, обрабатывает, хранит и отображает данные в компьютере.

Спектр масс может использоваться для определить массу аналитов, их элементный и изотопный состав или выяснить химическую структуру образца. МС - это эксперимент, который должен проводиться в газовой фазе и в вакууме (от 1,33 * 10 до 1,33 * 10 паскаль). Следовательно, разработка устройств, облегчающих переход от образцов, находящихся под более высоким давлением и в конденсированной фазе (твердой или жидкой), в вакуумную систему была важна для развития МС как мощного инструмента для идентификации и количественного определения органических соединений, таких как пептиды. В настоящее время МС широко используется в аналитических лабораториях, изучающих физические, химические или биологические свойства самых разных соединений. Среди множества различных типов масс-анализаторов в системах ЖХ-МС находят применение квадрупольные, времяпролетные (TOF), ионные ловушки и гибридные квадрупольные анализаторы TOF (QTOF).

Интерфейсы

Интерфейс между жидкофазным методом (ВЭЖХ) с непрерывно текущим элюатом и Газофазная техника, проводимая в вакууме, долгое время была сложной задачей. Появление ионизации электрораспылением изменило это. В настоящее время наиболее распространенными интерфейсами ЖХ-МС являются ионизация электрораспылением (ESI), химическая ионизация при атмосферном давлении (APCI) и фотоионизация при атмосферном давлении (APPI). Это более новые источники ионов МС, которые облегчают переход от среды высокого давления (ВЭЖХ) к условиям высокого вакуума, необходимого для анализатора МС. Хотя эти интерфейсы описаны отдельно, они также могут быть коммерчески доступны в виде двойных источников ионов ESI / APCI, ESI / APPI или APCI / APPI. В прошлом использовались различные методы осаждения и сушки (например, движущиеся ленты), но наиболее распространенным из них было нанесение MALDI в автономном режиме. Новый подход, который все еще находится в стадии разработки, называется интерфейс ЖХ-МС с прямым ЭУ, объединяет систему нано-ВЭЖХ и масс-спектрометр с электронной ионизацией.

Ионизация электрораспылением (ESI)

Интерфейс ESI для систем ЖХ-МС был разработан Фенном и сотрудниками в 1988 году. Этот ионный источник / интерфейс может использоваться для анализа умеренно полярных молекул (например, метаболитов, ксенобиотиков и пептидов). Жидкий элюат, выходящий из колонки LC, прокачивается через металлический капилляр, поддерживающий напряжение от 3 до 5 кВ. Жидкость распыляется на кончике капилляра, и образуется тонкая струя заряженных капель. Чтобы избежать загрязнения, этот капилляр обычно располагается перпендикулярно на входе в систему МС. Тепло, создаваемое электрическим потенциалом, используется для быстрого испарения капель в атмосфере сухого азота. Позже ионизированные аналиты переносятся в камеру высокого вакуума МС, когда заряженные ионы проходят через серию небольших отверстий с помощью фокусирующих напряжений. Можно обнаруживать положительно и отрицательно заряженные ионы, а также можно переключаться между отрицательным и положительным режимами работы. Большинство ионов, образующихся в интерфейсе ESI, являются многозарядными. Использование микроколонок с внутренним диаметром 1–3 мм рекомендуется для систем ЖХ-МС с интерфейсами ионизации электрораспылением (ESI), поскольку оптимальная работа достигается при расходах в диапазоне 50-200 мкл / мин.

Атмосферное давление химическая ионизация (APCI)

Разработка интерфейса APCI для ЖХ-МС началась с Хорнинга и его сотрудников в начале 1973 года. Однако его коммерческое применение было представлено в начале 1990-х годов после того, как Хенион и его сотрудники улучшили Интерфейс LC-APCI-MS в 1986 г. Источник / интерфейс APCI-ионов можно использовать для анализа небольших, нейтральных, относительно неполярных и термически стабильных молекул (например, стероидов, липидов и жирорастворимых витаминов). Эти соединения плохо ионизируются с помощью ESI. Кроме того, APCI может также обрабатывать потоки мобильной фазы, содержащие буферные агенты. Жидкость из системы LC перекачивается через капилляр, а также распыляется на конце, где происходит коронный разряд. Во-первых, ионизирующий газ, окружающий границу раздела, и растворитель подвижной фазы подвергаются химической ионизации в источнике ионов. Позже эти ионы вступают в реакцию с аналитом и передают свой заряд. Затем ионы пробы проходят через скиммеры с небольшими отверстиями с помощью линз для ионной фокусировки. Попадая в область высокого вакуума, ионы подвергаются массовому анализу. Этот интерфейс может работать в режимах положительного и отрицательного заряда, и в основном производятся однозарядные ионы. Источник ионов APCI также может работать со скоростью потока от 500 до 2000 мкл / мин и может быть напрямую подключен к обычным колонкам с внутренним диаметром 4,6 мм.

Фотоионизация при атмосферном давлении (APPI)

APPI Интерфейс для ЖХ-МС был разработан одновременно Bruins и Syage в 2000 году. APPI - еще один ионный источник / интерфейс для ЖХ-МС для анализа нейтральных соединений, которые нельзя ионизировать с помощью ESI. Этот интерфейс похож на источник ионов APCI, но вместо коронного разряда ионизация происходит с помощью фотонов, исходящих от разрядной лампы. В режиме прямого APPI однозарядные молекулярные ионы аналита образуются в результате поглощения фотона и выброса электрона. В режиме допант-APPI к подвижной фазе или распыляющему газу добавляется легко ионизируемое соединение (допант), чтобы способствовать реакции перезарядки между молекулярным ионом допанта и аналитом. Ионизированный образец позже переносится в масс-анализатор в высоком вакууме, когда он проходит через скиммеры с маленькими отверстиями.

Применения

Соединение МС с системами ЖХ привлекательно, поскольку жидкостная хроматография может разделять тонкие и сложные природные смеси, химический состав которых необходимо точно установить (например, биологические жидкости, образцы окружающей среды и лекарства). Кроме того, ЖХ-МС может применяться для анализа остатков летучих взрывчатых веществ. В настоящее время ЖХ-МС стал одним из наиболее широко используемых методов химического анализа, поскольку более 85% природных химических соединений являются полярными и термолабильными, а ГХ-МС не может обрабатывать эти образцы. Например, ВЭЖХ-МС считается ведущим аналитическим методом для протеомики и фармацевтических лабораторий. Другие важные применения ЖХ-МС включают анализ пищевых продуктов, пестицидов и растительных фенолов.

Фармакокинетика

ЖХ-МС широко используется в области биоанализ и специально участвует в фармакокинетических исследованиях фармацевтических препаратов. Необходимы фармакокинетические исследования, чтобы определить, насколько быстро лекарство будет выведено из органов тела и кровотока в печени. Анализаторы МС полезны в этих исследованиях из-за их более короткого времени анализа, а также более высокой чувствительности и специфичности по сравнению с УФ-детекторами, обычно присоединяемыми к системам ВЭЖХ. Одним из основных преимуществ является использование тандемного MS-MS, где детектор может быть запрограммирован на выбор определенных ионов для фрагментации. Измеряемая величина представляет собой сумму выбранных оператором фрагментов молекулы. При отсутствии помех или разделение ЖХ может быть довольно быстрым.

Протеомика / метаболомика

ЖХ-МС используется в протеомике как метод обнаружения и идентификации компонентов сложная смесь. Подход восходящей протеомики ЖХ-МС обычно включает расщепление протеазой и денатурацию с использованием трипсина в качестве протеазы, мочевины для денатурирования третичной структуры и йодацетамида для модификации остатков цистеина. После расщепления используется ЖХ-МС для получения отпечатков пептидной массы или ЖХ-МС / МС (тандемная МС) используется для получения последовательностей отдельных пептидов. ЖХ-МС / МС чаще всего используется для протеомного анализа сложных образцов, в которых массы пептидов могут перекрываться даже при масс-спектрометрии с высоким разрешением. Образцы сложных биологических веществ (например, сыворотки человека) можно анализировать в современных системах ЖХ-МС / МС, которые могут идентифицировать более 1000 белков. Однако такой высокий уровень идентификации белка возможен только после разделения образца с помощью геля SDS-PAGE или HPLC-SCX. В последнее время для поиска пептидных биомаркеров применяли ЖХ-МС / МС. Примером может служить недавнее открытие и валидация пептидных биомаркеров четырех основных бактериальных патогенов дыхательных путей (Staphylococcus aureus, Moraxella catarrhalis ; Haemophilus influenzae и Streptococcus pneumoniae ).

ЖХ-МС стала одним из наиболее часто используемых методов глобального профилирования метаболитов биологических тканей (например, плазмы крови, сыворотки, мочи). ЖХ-МС также используется для анализа натуральных продуктов и профилирования вторичных метаболитов в растениях. В этом отношении системы на основе МС полезны для получения более подробной информации о широком спектре соединений из сложных биологических образцов. ЖХ-ядерный магнитный резонанс (ЯМР ) также используется в метаболомике растений, но этот метод может обнаруживать и количественно определять только наиболее распространенные метаболиты. ЖХ-МС был полезен для развития области метаболомики растений, которая направлена ​​на изучение системы растений на молекулярном уровне, обеспечивая отсутствие -смещенная характеристика ион растения метаболом в ответ на окружающую среду. Первым применением ЖХ-МС в метаболомике растений было обнаружение широкого спектра высокополярных метаболитов, олигосахаридов, аминокислот, аминосахаров и сахарных нуклеотидов из тканей Cucurbita maxima флоэмы. Другим примером ЖХ-МС в метаболомике растений является эффективное разделение и идентификация глюкозы, сахарозы, рафинозы, стахиозы. и вербаскоза из экстрактов листьев Arabidopsis thaliana.

Разработка лекарств

ЖХ-МС часто используется при разработке лекарств, поскольку позволяет быстро подтвердить молекулярную массу и структуру. идентификация. Эти функции ускоряют процесс создания, тестирования и подтверждения открытия, начиная с огромного количества продуктов с потенциальным применением. Применение ЖХ-МС для разработки лекарств - это высокоавтоматизированные методы, используемые для картирования пептидов, картирования гликопротеинов, липодомики, дерепликации природных продуктов, биоаффинного скрининга, скрининга лекарств in vivo, скрининга метаболической стабильности, идентификации метаболитов, идентификации примесей, количественной биоанализ и контроль качества.

См. Также

Ссылки

Дополнительная литература

Последняя правка сделана 2021-05-27 11:04:56
Содержание доступно по лицензии CC BY-SA 3.0 (если не указано иное).
Обратная связь: support@alphapedia.ru
Соглашение
О проекте