Цитогенетика

редактировать
Метафазная клетка, положительная по перестройке BCR / ABL с использованием FISH

Цитогенетика, по сути, является ветвью генетики, но также является частью клеточной биологии / цитологии (подраздел анатомии человека), который касается того, как хромосомы связаны с поведением клеток, особенно с их поведением во время митоза и мейоз. Используемые методы включают кариотипирование, анализ хромосом с G-полосой, другие методы цитогенетического бэндинга, а также молекулярную цитогенетику, такую ​​как флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) и сравнительная геномная гибридизация (CGH).

Содержание
  • 1 История
    • 1.1 Начало
  • 2 Применение в биологии
    • 2.1 Работа МакКлинтока по кукурузе
    • 2.2 Природные популяции дрозофилы
    • 2.3 Лилия и мышь
  • 3 Человеческие аномалии и медицинские приложения
    • 3.1 Появление методов бэндинга
    • 3.2 Начало молекулярной цитогенетики
  • 4 Методы
    • 4.1 Кариотипирование
      • 4.1.1 Подготовка слайдов
      • 4.1.2 Анализ
    • 4.2 Флуоресцентный гибридизация на месте
      • 4.2.1 Подготовка слайдов
      • 4.2.2 Анализ
  • 5 Будущее цитогенетики
  • 6 См. также
  • 7 Ссылки
  • 8 Внешние ссылки
История

Начало

Хромосомы впервые были обнаружены в клетках растений Карлом Вильгельмом фон Нэгели в 1842 году. Их поведение в клетках животных (саламандра ) было описано Вальтером. Флемминг, открывший митоз, в 1882 году. Название было придумано другим немецким анатомом, фон Вальдейером в 1888 году.

Прошел следующий этап. после развития генетики в начале 20-х гг. столетие, когда стало понятно, что набор хромосом (кариотип ) является носителем генов. Левицкий, по-видимому, был первым, кто определил кариотип как фенотип появления соматических хромосом, в отличие от их генного содержимого. Изучение кариотипа человека заняло много лет, чтобы разрешить самый главный вопрос: сколько хромосом содержит нормальная диплоидная клетка человека? В 1912 году сообщалось о 47 хромосомах в сперматогониях и 48 в оогониях, заключая механизм XX/XO определения пола. Painter в 1922 г. не был уверен, было ли диплоидное число людей 46 или 48, сначала отдавая предпочтение 46. Позже он пересмотрел свое мнение с 46 на 48, и он правильно настаивал на том, что люди имеют XX / XY Система определения пола. Учитывая их методы, эти результаты были весьма примечательными. В научных книгах количество хромосом человека оставалось на уровне 48 более тридцати лет. Чтобы исправить эту ошибку, потребовались новые методы. Джо Хин Тжио, работающий в лаборатории Альберта Левана, был ответственным за поиск подхода:

  1. Использование клеток в культуре
  2. Предварительная обработка клеток в гипотонический раствор, который их набухает и распространяет хромосомы
  3. Прекращение митоза в метафазе раствором колхицина
  4. Раздавливание препарата на слайде, вынуждающем хромосомы в единую плоскость
  5. Разрезать микрофотографию и преобразовать результат в бесспорную кариограмму.

Только в 1956 году стало общепризнанным, что кариотип человека включал только 46 хромосомы. человекообразные обезьяны имеют 48 хромосом. Человеческая хромосома 2 была образована в результате слияния наследственных хромосом, в результате чего их количество уменьшилось.

Применение в биологии

Началась работа МакКлинток по кукурузе

Барбара МакКлинток ее карьера цитогенетика кукурузы. В 1931 году МакКлинток и Харриет Крейтон продемонстрировали, что цитологическая рекомбинация меченых хромосом коррелирует с рекомбинацией генетических признаков (генов ). МакКлинток, работая в Институте Карнеги, продолжил предыдущие исследования механизмов разрушения хромосом и слияния кукурузы. Она определила конкретное событие разрыва хромосомы, которое всегда происходило в одном и том же локусе на хромосоме 9 кукурузы, которую она назвала локусом «Ds» или «диссоциация». МакКлинток продолжила свою карьеру в цитогенетике, изучая механику и наследование сломанных и кольцевых (кольцевых) хромосом кукурузы. Во время своей цитогенетической работы МакКлинток обнаружила транспозоны, открытие, которое в конечном итоге привело к ее Нобелевской премии в 1983 году.

Природные популяции дрозофил

в 1930-е годы Добжанский и его сотрудники собрали Drosophila pseudoobscura из диких популяций в Калифорнии и соседних штатах. Используя технику Пейнтера, они изучили политенные хромосомы и обнаружили, что дикие популяции полиморфны для хромосомных инверсий. Все мухи похожи друг на друга, какие бы инверсии они ни несли: это пример загадочного полиморфизма.

Свидетельства быстро накапливались, чтобы показать, что естественный отбор виноват. Используя метод, изобретенный L'Héritier и Teissier, Добжанский разводил популяции в клетках для популяций, что позволяло кормить, разводить и собирать образцы, предотвращая побег. Это позволило исключить миграцию как возможное объяснение результатов. Запасы, содержащие инверсии с известной начальной частотой, могут поддерживаться в контролируемых условиях. Было обнаружено, что различные типы хромосом не колеблются случайным образом, как если бы они были избирательно нейтральными, а приспосабливались к определенным частотам, на которых они стабилизировались. К тому времени, когда Добжанский опубликовал третье издание своей книги в 1951 году, он был убежден, что хромосомные морфы поддерживаются в популяции за счет избирательного преимущества гетерозигот, как и в случае большинства полиморфизмов.

лилии и мыши

Лилия является предпочтительным организмом для цитологического исследования мейоза, поскольку хромосомы большие, и каждая морфологическая стадия мейоза может быть легко идентифицирована микроскопически. Хотта и др. представили доказательства общего паттерна синтеза ДНК и репарации в мужских мейотических клетках лилий и грызунов во время зиготен-пахитеновых стадий мейоза, когда предполагался кроссинговер. Наличие общего паттерна между такими филогенетически далекими организмами, как лилия и мышь, привело авт. К выводу, что организация мейотического кроссинговера, по крайней мере, у высших эукариот, вероятно, универсальна по распространению.

Патологии человека и применение в медицине
Филадельфийская транслокация t (9; 22) (q34; q11.2), наблюдаемая при хроническом миелолейкозе.

После появления процедур, которые позволили легко подсчитывать хромосомы, были быстро сделаны открытия, связанные с аберрантными хромосомами или числом хромосом. При некоторых врожденных заболеваниях, таких как синдром Дауна, цитогенетика выявила природу хромосомного дефекта: «простая» трисомия. Аномалии, возникающие в результате событий нерасхождения, могут вызывать клетки с анеуплоидией (добавления или удаления целых хромосом) у одного из родителей или у плода. В 1959 году Лежен обнаружил, что пациенты с синдромом Дауна имеют дополнительную копию хромосомы 21. Синдром Дауна также называют трисомией 21.

Другие обнаруженные числовые аномалии включают аномалии половых хромосом. Женщина с только одной Х-хромосомой имеет синдром Тернера, тогда как дополнительная Х-хромосома у мужчины, в результате чего всего 47 хромосом, имеет синдром Клайнфельтера. Многие другие комбинации половых хромосом совместимы с живорождением, включая XXX, XYY и XXXX. Способность млекопитающих переносить анеуплоидии в половых хромосомах возникает из-за способности инактивировать их, что требуется у нормальных самок для компенсации наличия двух копий хромосомы. Не все гены на Х-хромосоме инактивированы, поэтому у людей с лишними Х-хромосомами наблюдается фенотипический эффект.

Трисомия 13 была связана с синдромом Патау, а трисомия 18 - с синдромом Эдвардса.

В 1960 году Питер Новелл и Дэвид Хангерфорд обнаружили небольшую хромосому в белых кровяных тельцах пациентов. с Хронический миелолейкоз (ХМЛ). Эта аномальная хромосома была названа Филадельфийской хромосомой - поскольку оба ученых проводили свои исследования в Филадельфии, Пенсильвания. Тринадцать лет спустя, с развитием более совершенных методов, Джанет Роули показала, что аномальная хромосома является результатом транслокации хромосом 9 и 22. Идентификация филадельфийской хромосомы по цитогенетике является диагностическим средством для ХМЛ.

Появление техники полосатости

Мужской кариотип человека.

В конце 1960-х годов Торбьорн Касперссон разработал технику флуоресцентного окрашивания хинакрином (Q-полосу), которая позволила выявить уникальные схемы полосатости для каждая пара хромосом. Это позволило различать пары хромосом одинакового размера с помощью четких горизонтальных полос. Теперь для выявления точек разрыва и составляющих хромосом, участвующих в хромосомных транслокациях, используются шаблоны полос. Делеции и инверсии в отдельной хромосоме также могут быть идентифицированы и описаны более точно с использованием стандартизированной номенклатуры группирования. G-полосатость (с использованием трипсина и окраски по Гимзе / Райту) была одновременно разработана в начале 1970-х годов и позволяет визуализировать структуру полос с помощью микроскопа с ярким полем.

Диаграммы, идентифицирующие хромосомы на основе структуры полос, известны как идиограммы. Эти карты стали основой как пренатальной, так и онкологической областей, чтобы быстро перенести цитогенетику в клиническую лабораторию, где кариотипирование позволило ученым искать хромосомные изменения. Были расширены методы, позволяющие культивировать свободные амниоциты, извлеченные из околоплодных вод, а также методы удлинения для всех типов культур, которые позволяют создавать полосы с более высоким разрешением.

Начало молекулярной цитогенетики

В 1980-х годах были достигнуты успехи в молекулярной цитогенетике. В то время как зонды, меченные радиоизотопами, гибридизовали с ДНК с 1969 года, теперь было принято решение использовать флуоресцентно меченые зонды. Гибридизация их с препаратами хромосом с использованием существующих методов стала известна как флуоресцентная гибридизация in situ (FISH). Это изменение значительно расширило использование методов зондирования, поскольку зонды с флуоресцентной меткой более безопасны. Дальнейшие достижения в области микроманипуляции и исследования хромосом привели к технологии микродиссекции хромосом, с помощью которой аберрации в хромосомной структуре можно было выделить, клонировать и изучить еще более подробно.

Методы

Кариотипирование

Стандартный хромосомный анализ (Кариотипирование ) относится к анализу метафаз хромосом, которые были объединены с использованием трипсина, за которым следует Giemsa, Leishmanns или их смесь. Это создает уникальные полосы на хромосомах. Молекулярный механизм и причина этих паттернов неизвестны, хотя, вероятно, они связаны с временем репликации и упаковкой хроматина.

В цитогенетических лабораториях используется несколько методов разбивки хромосом. Хинакрин полосатость (Q-полосатость) была первым методом окрашивания, используемым для получения специфических полос. Для этого метода требуется флуоресцентный микроскоп, и он больше не используется так широко, как Giemsa бэнды (G-бэнды). Обратное полосатость, или R-полосатость, требует термической обработки и меняет обычный черно-белый узор, который наблюдается в G-полосах и Q-полосах. Этот метод особенно полезен для окрашивания дистальных концов хромосом. Другие методы окрашивания включают окрашивание С-полосами и ядрышко организующей области (окрашивание NOR). Эти последние методы специфически окрашивают определенные участки хромосомы. C-бэндинг окрашивает конститутивный гетерохроматин, который обычно находится рядом с центромерой, а окрашивание NOR выделяет сателлиты и стебли акроцентрических хромосом.

Бэндинг с высоким разрешением включает окрашивание хромосом в профаза или ранняя метафаза (прометафаза), прежде чем они достигнут максимальной конденсации. Поскольку хромосомы профазы и прометафазы более протяженные, чем хромосомы в метафазе, количество полос, наблюдаемых для всех хромосом, увеличивается с примерно 300 до 450 до целых 800. Это позволяет обнаруживать менее очевидные аномалии, которые обычно не наблюдаются при обычном бандажировании.

Препарат

Клетки костного мозга, крови, амниотической жидкости, пуповинной крови, опухоли и тканей (включая кожу, пуповина, ворсинки хориона, печень и многие другие органы) могут быть культивированы с использованием стандартных методов культивирования клеток для увеличения их количества. Затем в культуру добавляют митотический ингибитор (колхицин, колцемид ). Это останавливает деление клеток при митозе, что позволяет увеличить выход митотических клеток для анализа. Затем клетки центрифугируют, среду и ингибитор митоза удаляют и заменяют гипотоническим раствором. Это вызывает набухание белых кровяных телец или фибробластов, так что хромосомы распространяются при добавлении на предметное стекло, а также лизируют эритроциты. После того, как клеткам дали посидеть в гипотоническом растворе, добавляют фиксатор Карнуа (3: 1 метанол к ледяной уксусной кислоте ). Это убивает клетки и укрепляет ядра оставшихся лейкоцитов. Клетки обычно фиксируются многократно, чтобы удалить остатки или оставшиеся эритроциты. Затем суспензию клеток наносят на предметные стекла. После выдержки предметных стекол в духовке или ожидания в течение нескольких дней они готовы для обвязки и анализа.

Анализ

Анализ полосовых хромосом проводится под микроскопом клиническим лабораторным специалистом по цитогенетике (CLSp (CG)). Обычно анализируется 20 ячеек, чего достаточно, чтобы исключить мозаичность до приемлемого уровня. Результаты суммируются и передаются сертифицированному цитогенетику для рассмотрения и написания интерпретации с учетом предыдущей истории болезни пациента и других клинических данных. Затем результаты представлены в Международной системе цитогенетической номенклатуры человека 2009 (ISCN2009).

Флуоресцентная гибридизация in situ

Интерфазные клетки, положительные по перегруппировке t (9; 22)

Флуоресцентная гибридизация in situ (FISH) относится к использованию флуоресцентно меченого зонда для гибридизации с цитогенетическими клеточными препаратами.

В дополнение к стандартным препаратам FISH также может выполняться на:

препарат слайдов

Этот раздел относится к приготовлению стандартных цитогенетических препаратов

Предметное стекло выдерживают с использованием солевого раствора, обычно состоящего из 2X SSC (соль, цитрат натрия). Затем слайды обезвоживают в этаноле и добавляют смесь зондов. Затем образец ДНК и ДНК зонда совместно денатурируют с использованием нагретой пластины и дают возможность повторно отжигаться в течение по меньшей мере 4 часов. Затем предметные стекла промывают для удаления избытка несвязавшегося зонда и окрашивают 4 ', 6-диамидино-2-фенилиндолом (DAPI ) или иодидом пропидия.

Анализ

Анализ образцов FISH проводится с помощью флуоресцентной микроскопии клиническим лабораторным специалистом по цитогенетике. В онкологии обычно оценивается большое количество интерфазных клеток, чтобы исключить остаточную болезнь низкого уровня, обычно подсчитывается и оценивается от 200 до 1000 клеток. При врожденных проблемах обычно оценивается 20 метафазных клеток.

Будущее цитогенетики

Достижения теперь сосредоточены на молекулярной цитогенетике, включая автоматизированные системы для подсчета результатов стандартных препаратов FISH и методы виртуального кариотипирования, такие как сравнительные массивы геномной гибридизации, массивы CGH и однонуклеотидный полиморфизм.

См. Также
Ссылки
Внешние ссылки
Последняя правка сделана 2021-05-16 13:18:20
Содержание доступно по лицензии CC BY-SA 3.0 (если не указано иное).
Обратная связь: support@alphapedia.ru
Соглашение
О проекте